nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S4901
| Verwandte Ziele | ERK p38 MAPK Raf MEK Ras KRas S6 Kinase MAP4K TAK1 Mixed Lineage Kinase |
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| Weitere JNK Inhibitoren | CC-90001 SP600125 Anisomycin (Flagecidin) JNK Inhibitor IX Tanzisertib Hydrochloride (CC-930) JNK Inhibitor VIII BI-78D3 Polyphyllin I Bentamapimod (AS602801) DTP3 |
| Zelllinien | Assay-Typ | Konzentration | Inkubationszeit | Formulierung | Aktivitätsbeschreibung | PMID |
|---|---|---|---|---|---|---|
| human HeLa cells | Function assay | 1 h | Inhibition of JNK3-mediated c-jun phosphorylation in human HeLa cells after 1 hr incubation, IC50=0.486 μM | 25415535 | ||
| human A375 cells | Function assay | 1 h | Inhibition of JNK3-mediated c-jun phosphorylation in human A375 cells after 1 hr incubation, IC50=0.338 μM | 25415535 | ||
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| Molekulargewicht | 507.59 | Formel | C29H29N7O2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 1410880-22-6 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | JNK Inhibitor XVI | Smiles | CC1=C(C=CC(=C1)NC(=O)C2=CC(=CC=C2)NC(=O)C=CCN(C)C)NC3=NC=CC(=N3)C4=CN=CC=C4 | ||
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In vitro |
DMSO
: 100 mg/mL
(197.0 mM)
Water : Insoluble Ethanol : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Merkmale |
JNK-IN-8 and JNK-IN-7 are structurally very similar, but whereas the former is a specific covalent inhibitor of JNKs.
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|---|---|
| Targets/IC50/Ki |
JNK3
(A375 cells) 1 nM
JNK1
(A375 cells) 4.7 nM
JNK2
(A375 cells) 18.7 nM
Kit (V559D,T670I)
(A375 cells) 56 nM
Kit (V559D)
(A375 cells) 92 nM
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| In vitro |
JNK-IN-8 hemmt die c-Jun-Phosphorylierung in HeLa- und A375-Zellen mit einer EC50 von 486 nM bzw. 338 nM. Diese Verbindung zeigt eine dramatische Verbesserung der Selektivität und eliminierte die Bindung an IRAK1, PIK3C3, PIP4K2C und PIP5K3. Es erfordert Cys116 für die JNK2-Hemmung. Diese Chemikalie (10 mM) unterdrückt die IL-1β-stimulierte Phosphorylierung von c-Jun in IL-1R-Zellen, einem etablierten Substrat der JNKs. Die kovalente Anlagerung an die JNK-Isoformen führte zu einer geringen Verzögerung der elektrophoretischen Mobilität der JNK-Isoformen. Es wurde entdeckt, dass es die JNK-Kinase durch ein breit angelegtes Kinase-Selektivitätsprofiling einer Bibliothek von Acrylamid-Kinase-Inhibitoren basierend auf der Struktur unter Verwendung des KinomeScan-Ansatzes hemmt. Diese Verbindung besitzt eine ausgeprägte Regiochemie der 1,4-Dianilin- und 1,3-Aminobenzoesäure-Untereinheiten. Es nimmt eine L-förmige Typ-I-Bindungskonformation an, um Cys 154 zu erreichen, das sich zum Rand der ATP-Bindungsstelle hin befindet. |
| Kinase-Assay |
Bindungskinetik-Assay
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Bindungskinetik-Assay A375-Zellen werden mit 1 μM JNK-IN-8 für die angegebenen Zeiträume vorbehandelt. Das Medium entfernen und dreimal mit PBS waschen. Das Zellpellet mit 1 ml Lysepuffer (1% NP-40, 1% CHAPS, 25 mM Tris, 150 mM NaCl, Phosphatase Inhibitor Cocktail und Protease Inhibitor Cocktail) resuspendieren. 30 min bei 4℃ von Ende zu Ende rotieren. Lysate werden durch Zentrifugation bei 1,4×104 rpm für 15 min im Eppendorf geklärt. Die geklärten Lysate werden mittels 10DG-Säulen in Kinase-Puffer (0,1% NP-40, 20 mM HEPES, 150 mM NaCl, Phosphatase Inhibitor Cocktail, Protease Inhibitor Cocktail) gelfiltert. Die Gesamtproteinkonzentration des gelfilterten Lysats sollte etwa 5–15 mg/ml betragen. Zelllysat wird mit der Sonde von ActivX bei 5 μM für 1 Stunde markiert. Proben werden mit DTT reduziert, und Cysteine werden mit Iodoacetamid blockiert und gelfiltert, um überschüssige Reagenzien zu entfernen und den Puffer auszutauschen. 1 Volumen 2× Binding Buffer (2% Triton-100, 1% NP-40, 2 mM EDTA, 2× PBS) und 50 μL Streptavidin-Bead-Slurry hinzufügen und 2 Stunden von Ende zu Ende rotieren, bei 7.000 rpm für 2 min zentrifugieren. Dreimal mit 1× Binding Buffer und dreimal mit PBS waschen. 30 μL 1× Probenpuffer zu den Beads geben; Proben 10 min bei 95℃ erhitzen. Proben auf einem SDS-PAGE-Gel bei 110V laufen lassen. Nach dem Transfer wird die Membran mit JNK-Antikörper immungeblottet.
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| In vivo |
JNK-IN-8 ist ein potenter JNK-Inhibitor, der speziell die JNK-Aktivierung hemmt. Er besitzt antifungale Aktivität. |
Literatur |
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| Methoden | Biomarker | Bilder | PMID |
|---|---|---|---|
| Western blot | Notch1 / c-Myc / Cyclin D1 / p21 c-Jun / p-c-Jun / ATF2 / p-ATF2 / Elk-1 / pElk-1 |
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27941886 |
| Growth inhibition assay | Cell viability |
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25847947 |