Lucigenin

Katalog-Nr.S6824 Charge:S682401

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Technische Daten

Formel

C28H22N4O6
Molekulargewicht 510.5 CAS-Nr. 2315-97-1
Löslichkeit (25°C)* In vitro DMSO 20 mg/mL (39.17 mM)
Water Insoluble
Ethanol Insoluble
In vivo (Lösungsmittel einzeln und der Reihe nach zum Produkt hinzufügen.)
Homogeneous suspension
CMC-NA
≥5mg/ml Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.
* <1 mg/ml bedeutet schwer löslich oder unlöslich.
* Bitte beachten Sie, dass Selleck die Löslichkeit aller Verbindungen intern testet und die tatsächliche Löslichkeit geringfügig von veröffentlichten Werten abweichen kann. Dies ist normal und ist auf geringfügige Batch-zu-Batch-Variationen zurückzuführen.
* Versand bei Raumtemperatur (Stabilitätstests zeigen, dass dieses Produkt ohne Kühlmaßnahmen versendet werden kann.)

Vorbereitung von Stammlösungen

Biologische Aktivität

Beschreibung Lucigenin (NSC-151912, L-6868) ist eine Fluoreszenzsonde, die in Anwesenheit von endogen erzeugten Superoxidanionenradikalen und Chlorid in Zellen eine bläulich-grüne Fluoreszenz zeigt.
Ziele
superoxide anion radical chloride
In vitro

1.1 Herstellung der Stammlösung
Lösen Sie 1 mg Lucigenin in 0,1919 ml DMSO, um 10 mM dieser Verbindung zu erhalten.
Hinweis: Es wird empfohlen, die Stammlösung bei -20 00C bis -80 00C lichtgeschützt zu lagern und wiederholte Einfrier- und Auftauzyklen zu vermeiden.
1.2 Herstellung der Arbeitslösung dieser Verbindung
Verdünnen Sie die Stammlösung in serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS, um 5-10 5M dieser chemischen Arbeitslösung zu erhalten.
Hinweis: Bitte passen Sie die Konzentration dieser chemischen Arbeitslösung an die tatsächliche Situation an.
Zellfärbung
2.1 Zellvorbereitung.
Für Suspensionszellen: Bei 1000 g bei 40C für 3-5 Minuten zentrifugieren und dann den Überstand verwerfen. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
Für adhärente Zellen: Zellkulturmedium verwerfen und Trypsin hinzufügen, um die Zellen zu dissoziieren und eine Einzelzellsuspension zu bilden. Bei 1000 g bei 40C für 3-5 Minuten zentrifugieren und dann den Überstand verwerfen. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
2.2 1 ml der Arbeitslösung dieser Verbindung hinzufügen und dann 15 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren.
2.3 Bei 400 g bei 40C für 3-4 Minuten zentrifugieren und dann den Überstand verwerfen.
2.4 Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
2.5 Zellen mit serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS resuspendieren und dann mit einem Fluoreszenzmikroskop detektieren.

Protokoll (aus Referenz)

Referenzen

  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9442038/

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