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Lucigenin Dyes inhibiteur

Name: Lucigenin
Brand: Selleck Chemicals
SKU: S6824
Rating: 5 (1 reviews)

N° Cat.S6824

Lucigenin (NSC-151912, L-6868) est une sonde fluorescente qui présente une fluorescence bleu-vert en présence de radicaux anioniques superoxydes et de chlorure générés de manière endogène dans les cellules.

Lucigenin Dyes inhibiteur Chemical Structure

Structure chimique

Poids moléculaire: 510.5

Aller à

Contrôle qualité

Lot : S682401 DMSO]20 mg/mL]false]Water]Insoluble]false]Ethanol]Insoluble]false Pureté : 99.22%

Cité dans Nature Medicine pour sa qualité supérieure
COA
HPLC
SDS
Fiche technique

99.22

Cibles apparentées	PROTAC Others Antineoplastic and Immunosuppressive Antibiotics ADC Cytotoxin Selection Antibiotics for Transfected Cell Antibiotics for Mammalian Cell Culture ADC Linker Molecular Glues Hydrotropic Agents Antibiotics for Plant Cell Culture
Autre Dyes Inhibiteurs	Fluorofurimazine (FFz) CFSE Propidium Iodide DFO D-Luciferin Thiazolyl Blue Crystal Violet Hoechst 33342 D-Luciferin sodium salt Dihydroethidium

Informations chimiques, stockage et stabilité

Poids moléculaire	510.5	Formule	C₂₈H₂₂N₄O₆	Stockage (À partir de la date de réception)	3 years -20°C(in the dark) powder
N° CAS	2315-97-1	--		Stockage des solutions mères	1 an-80°Cen solvant 1 mois-20°Cen solvant
Synonymes	NSC-151912, L-6868			Smiles	C[N+]1=C2C=CC=CC2=C(C3=CC=CC=C31)C4=C5C=CC=CC5=[N+](C6=CC=CC=C64)C.[N+](=O)([O-])[O-].[N+](=O)([O-])[O-]

Solubilité

In vitro
Lot:

DMSO : 20 mg/mL (39.17 mM)
(Le DMSO contaminé par lhumidité peut réduire la solubilité. Utiliser du DMSO frais et anhydre.)

Water : Insoluble

Ethanol : Insoluble

Calculateur de molarité

Masse	Concentration	Volume	Poids moléculaire
=	×	×

Calculateur de dilution Calculateur de poids moléculaire

In vivo Lot:
Homogeneous suspension	CMC-NA	≥5mg/ml	Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.

Calculateur de formulation in vivo (Solution claire)

Étape 1 : Entrez les informations ci-dessous (Recommandé : Un animal supplémentaire pour tenir compte des pertes pendant lexpérience)

Dosage : mg/kg Poids moyen des animaux : g Volume de dosage par animal :μL Nombre danimaux :

Étape 2 : Entrez la formulation in vivo (Ceci nest que le calculateur, pas la formulation. Veuillez nous contacter dabord sil ny a pas de formulation in vivo dans la section Solubilité.)

% DMSO + % + % Tween 80 + % ddH₂O

%DMSO+ %

Résultats du calcul :

Concentration de travail : mg/ml;

Méthode de préparation du liquide maître DMSO : mg médicament prédissous dans μL DMSO ( Concentration du liquide maître mg/mL, Veuillez nous contacter dabord si la concentration dépasse la solubilité du DMSO du lot de médicament. )

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, ajouter ensuiteμL PEG300, mélanger et clarifier, ajouter ensuiteμL Tween 80, mélanger et clarifier, ajouter ensuite μL ddH₂O, mélanger et clarifier.

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, ajouter ensuite μL Huile de maïs, mélanger et clarifier.

Remarque : 1. Assurez-vous que le liquide est clair avant dajouter le solvant suivant.
2. Assurez-vous dajouter le(s) solvant(s) dans lordre. Vous devez vous assurer que la solution obtenue lors de lajout précédent est une solution claire avant de procéder à lajout du solvant suivant. Des méthodes physiques telles que le vortex, les ultrasons ou le bain-marie peuvent être utilisées pour faciliter la dissolution.

Mécanisme daction

Targets/IC₅₀/Ki	superoxide anion radical chloride
In vitro	1.1 Préparation de la solution mère Dissoudre 1 mg de Lucigenin dans 0,1919 mL de DMSO pour obtenir 10 mM de ce composé. Note: Il est recommandé de stocker la solution mère à -20 °C -80 °C à l'écart de la lumière et d'éviter les cycles répétitifs de congélation-décongélation. 1.2 Préparation de la solution de travail de ce composé Diluer la solution mère dans un milieu de culture cellulaire sans sérum ou du PBS pour obtenir 5-10 µM de cette solution chimique de travail. Note: Veuillez ajuster la concentration de cette solution chimique de travail en fonction de la situation réelle. Coloration cellulaire 2.1 Préparation des cellules. Pour les cellules en suspension: Centrifuger à 1000 g à 4°C pendant 3-5 minutes, puis jeter le surnageant. Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois. Pour les cellules adhérentes: Jeter le milieu de culture cellulaire et ajouter de la trypsine pour dissocier les cellules afin de faire une suspension unicellulaire. Centrifuger à 1000 g à 4°C pendant 3-5 minutes, puis jeter le surnageant. Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois. 2.2 Ajouter 1 mL de solution de travail de ce composé, puis incuber à température ambiante pendant 15 minutes. 2.3 Centrifuger à 400 g à 4°C pendant 3-4 minutes, puis jeter le surnageant. 2.4 Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois. 2.5 Resuspendre les cellules avec un milieu de culture cellulaire sans sérum ou du PBS, puis détecter par microscope à fluorescence.
Références	[1] https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9442038/

Support technique

Instructions de manipulation

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

Si vous avez dautres questions, veuillez laisser un message.

C1=C0/X	C1:	LOG(C1):
C2=C1/X	C2:	LOG(C2):
C3=C2/X	C3:	LOG(C3):
C4=C3/X	C4:	LOG(C4):
C5=C4/X	C5:	LOG(C5):
C6=C5/X	C6:	LOG(C6):
C7=C6/X	C7:	LOG(C7):
C8=C7/X	C8:	LOG(C8):