nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S1969
| Verwandte Ziele | Adrenergic Receptor AChR 5-HT Receptor COX Calcium Channel Histamine Receptor Dopamine Receptor TRP Channel Cholinesterase (ChE) GluR |
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| Weitere GABA Receptor Inhibitoren | Dihydromyricetin CGP52432 Oxiracetam Ginkgolide A Pentylenetetrazol 4-Aminobutyric acid (GABA) Emamectin Benzoate Piracetam Bemegride 6-Hydroxyflavone (6-HF) |
| Molekulargewicht | 246.3 | Formel | C14H18N2O2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 77191-36-7 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | DZL 221 | Smiles | CC1=C(C(=CC=C1)C)NC(=O)CN2CCCC2=O | ||
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In vitro |
DMSO
: 49 mg/mL
(198.94 mM)
Ethanol : 49 mg/mL Water : 3 mg/mL |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
GABA receptor
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| In vitro |
Nefiracetam erhöht bei einer Konzentration von 1 μM eine langanhaltende Komponente von Kalziumkanalströmen um das Zweifache, ohne eine transiente Komponente zu beeinflussen. Diese Verbindung induziert eine kurzfristige Depression ACh-evozierter Ströme bei submikromolaren Konzentrationen (0,01–0,1 μM) und eine langfristige Verstärkung der Ströme bei mikromolaren Konzentrationen (1–10 μM). Es interagiert mit PKA- und PKC-Signalwegen, was einen zellulären Mechanismus für die Wirkung kognitionsfördernder Mittel erklären könnte. Niedrigere (submikromolare) Konzentrationen des Nootropikums reduzieren ACh-evozierte Ströme nach einer 10-minütigen Behandlung auf 30 % (0,01 μM) und 38 % (0,1 μM) der Kontrolle. In Primärkulturen von Ratten-Hippocampusneuronen erhöht diese Verbindung die Rate nikotinempfindlicher exzitatorischer postsynaptischer Miniaturströme. Sie induziert eine langanhaltende Fazilitation der synaptischen Übertragung sowohl im CA1-Bereich als auch im Gyrus dentatus von Ratten-Hippocampus-Schnitten, und die Fazilitation wird durch α-Bungarotoxin und Mecamylamin gehemmt. Diese Chemikalie verstärkt die Aktivität nikotinischer ACh-Rezeptoren durch Interaktion mit einem PKC-Signalweg, wodurch die Glutamatfreisetzung aus präsynaptischen Endigungen erhöht wird und dann zu einer anhaltenden Fazilitation der hippocampalen Neurotransmission führt.
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| Kinase-Assay |
Assay der Glutamatfreisetzung
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Hippocampus-Slices (400 μM) werden aus dem Meerschweinchengehirn unter Verwendung von Standardtechniken präpariert. Ein Slice wird auf einem Paar von Silberdrahtelektroden (10 Hz, 5 V, 0,1 ms Dauer) in 1-Minuten-Intervallen für 10 Minuten fixiert und in 1 ml standardmäßiger künstlicher Zerebrospinalflüssigkeit (ACSF) (in mM: 125 mM NaCl, 5 mM KCl, 1,24 mM KH2PO4, 1,3 mM MgSO4, 2 mM CaCl2, 26 mM NaHCO3 und 10 mM Glucose), oxygeniert mit 95 % O2 und 5 % CO2 bei 36 °C, in An- und Abwesenheit von Tetrodotoxin (TTX) (0,5 μM) eingetaucht. In einer anderen Versuchsreihe wird eine elektrische Stimulation auf Slices angewendet, die mit dieser Verbindung (1 μM) in An- und Abwesenheit von α-Bungarotoxin (50 nM) oder Mecamylamin (3 μM) behandelt wurden. Ein 100 μL Aliquot des Mediums, das mit Millipore-Filtern (0,45 μM) filtriert wurde, wird auf die Kationenaustauschersäule des Autoanalysators injiziert, um Aminosäuren zu trennen, und die Menge des freigesetzten Glutamats wird unter Verwendung bekannter Aminosäure-Standardkonzentrationen berechnet.
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| In vivo |
Oral verabreichtes Nefiracetam hemmt Ro 5-4864-induzierte Krämpfe bei EL-Mäusen. Diese Verbindung hemmt auch effizient Ro 5-4864-induzierte Krämpfe bei DDY-Mäusen in Dosen über 10 mg/kg. Bei täglicher Verabreichung 1 Stunde vor jeder Trainingseinheit erleichtert es den Erwerb der Vermeidereaktion.
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Literatur |
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Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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