nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S1489
| Molekulargewicht | 389.88 | Formel | C14H16ClN3O4S2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 593960-11-3 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | CC1=C(SC(=N1)NC(=O)C)C2=CC(=C(C=C2)Cl)S(=O)(=O)NCCO | ||
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In vitro |
DMSO
: 78 mg/mL
(200.06 mM)
Ethanol : 1 mg/mL Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Merkmale |
A novel and potent inhibitor of both PI3Kγ and PI4KIIIβ.
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|---|---|
| Targets/IC50/Ki |
p110γ
16 nM
PI4KIIIβ
19 nM
p110α
39 nM
DNA-PK
64 nM
p110δ
120 nM
C2β
140 nM
hsVps34
320 nM
ATM
490 nM
p110β
590 nM
PI4KIIIα
1.1 μM
mTORC1
1.38 μM
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| In vitro |
PIK-93 hemmt PI3Kγ und PI4KIIIβ mit IC50-Werten von 16 nM bzw. 19 nM. Diese Verbindung hemmt auch andere Mitglieder der PI3Ks, einschließlich PI3Kα, β und δ, mit IC50-Werten von 39 nM, 0,59 μM bzw. 0,12 μM. Es zeigt keine offensichtliche Hemmwirkung gegen eine Reihe anderer Kinasen, selbst bei einer Konzentration von 10 μM.
In differenzierten HL60 (dHL60)-Zellen beeinträchtigt diese Verbindung (0,5 μM–1 μM) die Konsolidierung und Stabilität der führenden Kante, die nach Behandlung mit uniformem f-Met-Leu-Phe (fMLP) gebildet wird. Es verändert die Lokalisation, aber nicht die Menge der fMLP-abhängigen Akkumulation von Gesamt-F-Actin. In fMLP-Gradienten reduziert diese Chemikalie den chemotaktischen Index und verdreifacht die Drehungsfrequenz der Zellen.
In COS-7-Zellen unterdrückt diese Verbindung (250 nM) effektiv die Akkumulation von CERT-PH-Domäne und FL-Cer im Golgi. Bei gleicher Konzentration hemmt sie auch signifikant die Umwandlung von [3H]Serin-markiertem endogenem Ceramid zu Sphingomyelin. Diese Fakten deuten auf eine Schlüsselrolle von PI4KIIIβ beim Ceramidtransport zwischen ER und Golgi sowie bei der Regulation der Sphingomyelinsynthese hin.
In T6.11-Zellen reduziert diese Verbindung (300 nM) die Carbachol-induzierte Translokation von TRPC6 zur Plasmamembran und den Netto-Ca2+-Eintritt.
Ein kürzlich veröffentlichter Bericht zeigt, dass diese Chemikalie anti-enterovirale Wirkungen hat, wie durch ihre Hemmung der Replikation von Poliovirus (PV) und Hepatitis-C-Virus (HCV) mit EC50-Werten von 0,14 µM bzw. 1,9 µM gezeigt wird.
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| Kinase-Assay |
Assay von PI3Ks
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IC50-Werte werden mit einem Standard-TLC-Assay für die Lipidkinase-Aktivität gemessen. Kinase-Reaktionen werden durchgeführt, indem eine Reaktionsmischung aus Kinase, PIK-93 (2 % DMSO Endkonzentration), Puffer (25 mM HEPES, pH 7,4, 10 mM MgCl2) und frisch beschalltem Phosphatidylinositol (100 µg/ml) hergestellt wird. Die Reaktionen werden durch Zugabe von ATP, das 10 µCi γ-32P-ATP enthält, zu einer Endkonzentration von 10 oder 100 µM gestartet und 20 min bei Raumtemperatur fortgesetzt. Für die TLC-Analyse werden die Reaktionen dann durch Zugabe von 105 µL 1N HCl, gefolgt von 160 µL CHCl3:MeOH (1:1), beendet. Die zweiphasige Mischung wird gevortext, kurz zentrifugiert und die organische Phase mit einer mit CHCl3 vorbeschichteten Gelpipettenspitze in ein neues Röhrchen überführt. Dieser Extrakt wird auf TLC-Platten aufgetragen und 3 Stunden–4 Stunden in einer 65:35-Lösung aus n-Propanol:1M Essigsäure entwickelt. Die TLC-Platten werden dann getrocknet, einem Phosphorimager-Bildschirm ausgesetzt und quantifiziert. Die Kinase-Aktivität wird typischerweise bei 10–12 Konzentrationen dieser Verbindung gemessen, die zweifache Verdünnungen von der höchsten Konzentration von 100 μM darstellen.
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Literatur |
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Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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