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Hoechst 33342 Dyes Chemikalie

Kat.-Nr.S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, Bisbenzimid H 33342, HOE 33342, HO342) ist ein membrangängiger Fluoreszenzfarbstoff, der lebende Zellen anfärben kann. Diese Verbindung bindet an Regionen der DNA mit hohem Gehalt an Adenin in der kleinen Furche und erhöht die Fluoreszenz erheblich. Sie ermöglicht eine einfache Visualisierung des Zellkerns in Interphasezellen und der Chromosomen in mitotischen Zellen.
Hoechst 33342 Dyes Chemikalie Chemical Structure

Chemische Struktur

Molekulargewicht: 452.55

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Qualitätskontrolle

Charge: Reinheit: 99.94%
99.94

Chemische Informationen, Lagerung & Stabilität

Molekulargewicht 452.55 Formel

C27H28N6O

Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) 3 years -20°C powder
CAS-Nr. 23491-52-3 -- Lagerung von Stammlösungen

Synonyme Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Löslichkeit

In vitro
Charge:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Feuchtigkeitskontaminiertes DMSO kann die Löslichkeit verringern. Verwenden Sie frisches, wasserfreies DMSO.)

Ethanol : Insoluble

Molaritätsrechner

Masse Konzentration Volumen Molekulargewicht
Verdünnungsrechner Molekulargewichtsrechner

In vivo
Charge:

In-vivo-Formulierungsrechner (Klare Lösung)

Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)

mg/kg g μL

Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berechnungsergebnisse:

Arbeitskonzentration: mg/ml;

Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.

Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.

Wirkmechanismus

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Herstellung der Stammlösung
Lösen Sie 10 mg Hoechst 33342 in 5 ml DMSO.
Hinweis: Es wird empfohlen, die Stammlösung bei 4 °C oder -20 °C lichtgeschützt zu lagern und wiederholte Gefrier-Auftau-Zyklen zu vermeiden.
1.2 Herstellung der Arbeitslösung dieser
Chemikalie Verdünnen Sie die Stammlösung in serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS, um eine Endkonzentration von 10 μg/ml dieser Chemikalie-Arbeitslösung zu erhalten.
Hinweis: Bitte passen Sie die Konzentration dieser Reagenz-Arbeitslösung entsprechend der tatsächlichen Situation an.
1. Zellfärbung
2.1 Suspensionszellen (6-Well-Platte)
a. Zentrifugieren Sie bei 1000 g und 4 °C für 3–5 Minuten und entsorgen Sie dann den Überstand. Waschen Sie zweimal mit PBS, jeweils 5 Minuten lang. Die Zelldichte beträgt 1×106/ml.
b. 1 mL Arbeitslösung hinzufügen und dann 3–10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren.
c. Bei 400 g und 4 °C 3–4 Minuten lang zentrifugieren und anschließend den Überstand verwerfen.
d. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten lang.
e. Zellen mit serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS resuspendieren. Beobachtung durch Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie.
2.2 Adhärente Zellen
a. Adhärente Zellen auf sterilen Deckgläsern kultivieren.
b. Das Deckglas aus dem Medium entfernen und überschüssiges Medium absaugen.
c. 100 μl Arbeitslösung hinzufügen, vorsichtig schütteln, um die Zellen vollständig zu bedecken, und dann 3–10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren.
d. Zweimal mit Medium waschen, jeweils 5 Minuten lang. Beobachtung durch Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie.

Literatur

Technischer Support

Handhabungshinweise

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

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