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nur für Forschungszwecke

Hoechst 33342 Dyes chemical

Kat.-Nr.: S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342) is a membrane-permeant fluorescent stain that can stain live cells. This compound binds to adenine-thymine-rich regions of DNA in the minor groove and greatly increases the fluorescence. It allows easy visualization of the nucleus in interphase cells and chromosomes in mitotic cells.
Hoechst 33342 Dyes chemical Chemical Structure

Chemische Struktur

Molekulargewicht: 452.55

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Qualitätskontrolle (Quality Control)

Charge: Reinheit: 99.94%
99.94

Chemische Informationen, Lagerung & Stabilität (Chemical Information, Storage & Stability)

Molekulargewicht 452.55 Formel

C27H28N6O

 Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) 3 years -20°C powder
CAS-Nr. 23491-52-3 -- Lagerung von Stammlösungen

Synonyme Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Löslichkeit (Solubility)

In vitro
Charge:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Feuchtigkeitskontaminiertes DMSO kann die Löslichkeit verringern. Verwenden Sie frisches, wasserfreies DMSO.)

Ethanol : Insoluble

Molaritätsrechner

Masse Konzentration Volumen Molekulargewicht
Verdünnungsrechner Molekulargewichtsrechner

In vivo
Charge:

In-vivo-Formulierungsrechner (Klare Lösung)

Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)

mg/kg g μL

Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berechnungsergebnisse:

Arbeitskonzentration: mg/ml;

Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.

Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.

Wirkmechanismus (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Herstellung der Stammlösung
Lösen Sie 10 mg Hoechst 33342 in 5 mL DMSO
Hinweis: Es wird empfohlen, die Stammlösung bei 4℃ oder -20℃ lichtgeschützt zu lagern und wiederholte Gefrier-Auftau-Zyklen zu vermeiden.
1.2 Herstellung der Arbeitslösung dieses Wirkstoffs
Verdünnen Sie die Stammlösung in serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS, um eine Endkonzentration von 10 μg/mL dieser chemischen Arbeitslösung zu erhalten.
Hinweis: Bitte passen Sie die Konzentration dieser Reagenz-Arbeitslösung an die tatsächliche Situation an.
1.Zellfärbung
2.1 Suspensionszellen (6-Well-Platte)
a. Zentrifugieren Sie bei 1000 g bei 4℃ für 3-5 Minuten und verwerfen Sie anschließend den Überstand. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten. Die Zelldichte beträgt 1×106/mL.
b. Geben Sie 1 mL Arbeitslösung hinzu und inkubieren Sie anschließend bei Raumtemperatur für 3-10 Minuten.
c. Zentrifugieren Sie bei 400 g bei 4℃ für 3-4 Minuten und verwerfen Sie anschließend den Überstand.
d. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
e. Resuspendieren Sie die Zellen mit serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS. Beobachtung mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie.
2.2 Adhärente Zellen
a. Kultivieren Sie adhärente Zellen auf sterilen Deckgläsern.
b. Entfernen Sie das Deckglas aus dem Medium und saugen Sie überschüssiges Medium ab.
c. Geben Sie 100 μL Arbeitslösung hinzu, schütteln Sie sie vorsichtig, um die Zellen vollständig zu bedecken, und inkubieren Sie anschließend bei Raumtemperatur für 3-10 Minuten.
d. Zweimal mit Medium waschen, jeweils 5 Minuten. Beobachtung mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie.
Literatur