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Hoechst 34580 Beta Amyloid Inhibitor

Kat.-Nr.S0486

Hoechst 34580 (HOE 34580) ist ein zellpermeabler blauer Fluoreszenzfarbstoff zur Anfärbung von DNA und Zellkernen. Diese Verbindung ist auch ein guter Kandidat für die Behandlung der Alzheimer-Krankheit, indem sie die Amyloid-beta (Aβ)-Bildung mit einer IC50 von 0,86 μM hemmt.
Hoechst 34580 Beta Amyloid Inhibitor Chemical Structure

Chemische Struktur

Molekulargewicht: 451.57

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Qualitätskontrolle

Charge: S048601 Water]90 mg/mL]false]DMSO]5 mg/mL]false]Ethanol]Insoluble]false Reinheit: 99.73%
  • In Nature Medicine für seine erstklassige Qualität zitiert
  • COA
  • HPLC
  • SDS
  • Datenblatt
99.73

Chemische Informationen, Lagerung & Stabilität

Molekulargewicht 451.57 Formel

C27H29N7

Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) 3 years -20°C powder
CAS-Nr. 23555-00-2 -- Lagerung von Stammlösungen

Synonyme HOE 34580 Smiles CN1CCN(CC1)C2=CC3=C(C=C2)N=C(N3)C4=CC5=C(C=C4)N=C(N5)C6=CC=C(C=C6)N(C)C

Löslichkeit

In vitro
Charge:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 5 mg/mL (11.07 mM)
(Feuchtigkeitskontaminiertes DMSO kann die Löslichkeit verringern. Verwenden Sie frisches, wasserfreies DMSO.)

Ethanol : Insoluble

Molaritätsrechner

Masse Konzentration Volumen Molekulargewicht
Verdünnungsrechner Molekulargewichtsrechner

In vivo
Charge:

In-vivo-Formulierungsrechner (Klare Lösung)

Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)

mg/kg g μL

Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berechnungsergebnisse:

Arbeitskonzentration: mg/ml;

Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.

Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.

Wirkmechanismus

Targets/IC50/Ki

(Cell-free assay)
0.86 μM
In vitro

1.1 Herstellung der Stammlösung
Lösen Sie 10 mg Hoechst 34580 in 5 ml DMSO auf.
Hinweis: Es wird empfohlen, die Stammlösung bei 4 °C oder -20 °C lichtgeschützt zu lagern und wiederholte Gefrier-Tau-Zyklen zu vermeiden.
1.2 Herstellung der Arbeitslösung dieser Verbindung
Verdünnen Sie die Stammlösung in serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS, um eine Endkonzentration von 10 µg/ml dieser chemischen Arbeitslösung zu erhalten.
Hinweis: Bitte passen Sie die Konzentration der Arbeitslösung dieser Verbindung an die tatsächliche Situation an.
1.Zellfärbung
2.1 Suspensionszellen (6-Well-Platte)
a. Zentrifugieren Sie bei 1000 g bei 4 °C für 3-5 Minuten und verwerfen Sie dann den Überstand. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten. Die Zelldichte beträgt 1×106/ml.
b. Geben Sie 1 ml Arbeitslösung hinzu und inkubieren Sie dann bei Raumtemperatur für 3-10 Minuten.
c. Zentrifugieren Sie bei 400 g bei 4 °C für 3-4 Minuten und verwerfen Sie dann den Überstand.
d. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
e. Resuspendieren Sie die Zellen mit serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS. Beobachtung durch Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie.
2.2 Adhärente Zellen
a. Kultivieren Sie adhärente Zellen auf sterilen Deckgläsern.
b. Entfernen Sie das Deckglas aus dem Medium und saugen Sie überschüssiges Medium ab.
c. Geben Sie 100 µl Arbeitslösung hinzu, schütteln Sie es vorsichtig, um die Zellen vollständig zu bedecken, und inkubieren Sie dann bei Raumtemperatur für 3-10 Minuten.
d. Zweimal mit Medium waschen, jeweils 5 Minuten. Beobachtung durch Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie.

Literatur

Technischer Support

Handhabungshinweise

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

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