nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S2438
| Verwandte Ziele | AChR 5-HT Receptor COX Calcium Channel Histamine Receptor Dopamine Receptor GABA Receptor TRP Channel Cholinesterase (ChE) GluR |
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| Weitere Adrenergic Receptor Inhibitoren | ICI 118551 Hydrochloride (Zenidolol) L755507 Yohimbine HCl Atipamezole Naftopidil Detomidine HCl Higenamine hydrochloride Adrenalone HCl Medetomidine HCl Deoxycorticosterone acetate |
| Molekulargewicht | 203.67 | Formel | C9H13NO2.HCl |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 5985-28-4 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | CNCC(C1=CC=C(C=C1)O)O.Cl | ||
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In vitro |
Water : 41 mg/mL
DMSO
: 14 mg/mL
(68.73 mM)
Ethanol : 4 mg/mL |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
α-adrenergic receptor
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| In vitro |
Synephrine (0,1–30 μM) zeigt in isolierten Rattenaorten dosisabhängig potente vasokonstriktive Wirkungen, die durch Vorbehandlung mit Prazosin, BRL15572 und Ketanserin signifikant gehemmt werden können, jedoch nicht durch Vorbehandlung mit SB216641 und Propranolol. Dies deutet darauf hin, dass Synephrine die konstriktiven Wirkungen über adrenerge alpha(1)-Rezeptoren, serotonerge 5-HT(1D)-Rezeptoren und 5-HT(2A)-Rezeptoren ausübt. Obwohl die Ki-Werte von Synephrine, 1R,2S-Norephedrin und β-Phenethylamin für alle drei Subtypen gleich sind, ist nur Synephrine ein partieller Agonist des α1A-AR-Subtyps, der stabil in HEK293-Zellen exprimiert wird, mit einer EC50 von 4 µM, was eine maximale Reaktion bei 100 µM ergibt, die 55,3 % des L-Phenylephrin-Maximums entspricht. Funktionelle Studien an den α2A- und α2C-AR-Subtypen, die stabil in CHO-Zellen exprimiert werden, zeigen, dass Synephrine eher als Antagonist denn als Agonist der präsynaptischen α(2A)- und α(2C)-AR-Subtypen in Nervenendigungen wirken kann, obwohl die antagonistische Aktivität von Synephrine geringer ist als seine partielle Agonistenpotenz. Die Behandlung mit Synephrine (~100 μM) erhöht den basalen Glukoseverbrauch in einer dosisabhängigen Weise um bis zu 50 % gegenüber der Kontrolle, ohne die Viabilität von L6-Skelettmuskelzellen zu beeinflussen. Synephrine stimuliert signifikant die basale oder Insulin-stimulierte Milchsäureproduktion sowie den Glukoseverbrauch. Die Behandlung mit Synephrine stimuliert die Phosphorylierung von AMPK, aber nicht von Akt, und der Synephrine-induzierte Glukoseverbrauch und die Translokation von Glut4 aus dem Zytoplasma zur Plasmamembran sind empfindlich gegenüber der Hemmung von AMPK, aber nicht gegenüber der Hemmung der PI3-Kinase.
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| In vivo |
Die Verabreichung von Synephrine (1 mg/kg alle 12 Stunden) über 8 Tage verbessert signifikant den hyperdynamischen Zustand bei portal hypertensiven Ratten, der entweder durch eine partielle Pfortaderligatur (PVL) oder eine Gallengangsligatur (BDL) induziert wurde, und reduziert signifikant den portalvenösen Druck, den Blutfluss in den Pfortaderästen und den Herzindex sowohl bei PVL- als auch bei BDL-Ratten.
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Literatur |
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