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Lucigenin Dyes Inhibitor

Kat.-Nr.S6824

Lucigenin (NSC-151912, L-6868) ist eine Fluoreszenzsonde, die in Anwesenheit von endogen erzeugten Superoxidanionenradikalen und Chlorid in Zellen eine bläulich-grüne Fluoreszenz zeigt.
Lucigenin Dyes Inhibitor Chemical Structure

Chemische Struktur

Molekulargewicht: 510.5

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Qualitätskontrolle

Charge: S682401 DMSO]20 mg/mL]false]Water]Insoluble]false]Ethanol]Insoluble]false Reinheit: 99.22%
  • In Nature Medicine für seine erstklassige Qualität zitiert
  • COA
  • HPLC
  • SDS
  • Datenblatt
99.22

Chemische Informationen, Lagerung & Stabilität

Molekulargewicht 510.5 Formel

C28H22N4O6

Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) 3 years -20°C(in the dark) powder
CAS-Nr. 2315-97-1 -- Lagerung von Stammlösungen

Synonyme NSC-151912, L-6868 Smiles C[N+]1=C2C=CC=CC2=C(C3=CC=CC=C31)C4=C5C=CC=CC5=[N+](C6=CC=CC=C64)C.[N+](=O)([O-])[O-].[N+](=O)([O-])[O-]

Löslichkeit

In vitro
Charge:

DMSO : 20 mg/mL (39.17 mM)
(Feuchtigkeitskontaminiertes DMSO kann die Löslichkeit verringern. Verwenden Sie frisches, wasserfreies DMSO.)

Water : Insoluble

Ethanol : Insoluble

Molaritätsrechner

Masse Konzentration Volumen Molekulargewicht
Verdünnungsrechner Molekulargewichtsrechner

In vivo
Charge:

In-vivo-Formulierungsrechner (Klare Lösung)

Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)

mg/kg g μL

Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berechnungsergebnisse:

Arbeitskonzentration: mg/ml;

Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.

Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.

Wirkmechanismus

Targets/IC50/Ki
superoxide anion radical
chloride
In vitro

1.1 Herstellung der Stammlösung
Lösen Sie 1 mg Lucigenin in 0,1919 ml DMSO, um 10 mM dieser Verbindung zu erhalten.
Hinweis: Es wird empfohlen, die Stammlösung bei -20 00C bis -80 00C lichtgeschützt zu lagern und wiederholte Einfrier- und Auftauzyklen zu vermeiden.
1.2 Herstellung der Arbeitslösung dieser Verbindung
Verdünnen Sie die Stammlösung in serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS, um 5-10 5M dieser chemischen Arbeitslösung zu erhalten.
Hinweis: Bitte passen Sie die Konzentration dieser chemischen Arbeitslösung an die tatsächliche Situation an.
Zellfärbung
2.1 Zellvorbereitung.
Für Suspensionszellen: Bei 1000 g bei 40C für 3-5 Minuten zentrifugieren und dann den Überstand verwerfen. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
Für adhärente Zellen: Zellkulturmedium verwerfen und Trypsin hinzufügen, um die Zellen zu dissoziieren und eine Einzelzellsuspension zu bilden. Bei 1000 g bei 40C für 3-5 Minuten zentrifugieren und dann den Überstand verwerfen. Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
2.2 1 ml der Arbeitslösung dieser Verbindung hinzufügen und dann 15 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren.
2.3 Bei 400 g bei 40C für 3-4 Minuten zentrifugieren und dann den Überstand verwerfen.
2.4 Zweimal mit PBS waschen, jeweils 5 Minuten.
2.5 Zellen mit serumfreiem Zellkulturmedium oder PBS resuspendieren und dann mit einem Fluoreszenzmikroskop detektieren.

Literatur

Technischer Support

Handhabungshinweise

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

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