nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S2857
| Molekulargewicht | 337.37 | Formel | C16H15N.C4H4O4 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 121917-57-5 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | C13737 | Smiles | CC12C3=CC=CC=C3CC(N1)C4=CC=CC=C24.C(=CC(=O)O)C(=O)O | ||
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In vitro |
DMSO
: 67 mg/mL
(198.59 mM)
Ethanol : 7 mg/mL Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
NMDA receptor
30.5 nM(Ki)
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| In vitro |
Neurophysiologische In-vitro-Studien unter Verwendung einer Rattencortex-Schnittpräparation zeigen eine potente, selektive und nichtkompetitive antagonistische Wirkung von Dizocilpin auf depolarisierende Reaktionen auf N-Me-D-Asp, aber nicht auf Kainat oder Quisqualat. Die Potenzen von SKF 10047 und den Enantiomeren von Dizocilpin als N-Me-D-Asp-Antagonisten korrelieren eng (r = 0,99) mit ihren Potenzen als Inhibitoren der [3H]-Dizocilpin-Bindung. Dies legt nahe, dass die Dizocilpin-Bindungsstellen mit N-Me-D-Asp-Rezeptoren assoziiert sind und liefert eine Erklärung für den Wirkmechanismus von Dizocilpin als Antikonvulsivum. |
| Kinase-Assay |
In-vitro-Bindungsassays
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Für In-vitro-Bindungsassays werden zerebrale Kortizes von männlichen Sprague-Dawley-Ratten (200-300 g) in 9 Volumina eiskalter Saccharose durch neun Hübe mit einem Teflon/Glas-Homogenisator bei 500 U/min homogenisiert. Das Homogenat wird 10 Minuten lang bei 1000 x g zentrifugiert, und der Überstand wird 20 Minuten lang bei 10.000 x g bei 4 ℃ erneut zentrifugiert. Das Pellet wird in Assay-Puffer suspendiert und 20 Minuten lang inkubiert, bevor die abschließende Zentrifugation bei 10.000 x g für 20 Minuten bei 4 ℃ erfolgt. Das Pellet wird in Assay-Puffer (70 ml pro Gramm Originalgewebe) resuspendiert. Die Bindung von [3H]-Dizocilpin wird gemessen, indem 750 ul Duplikat-Aliquots dieser rohen Membransuspension (=0,75 mg Protein) mit 100 ul Puffer, der Verdränger enthält, oder Puffer allein (Gesamtbindung), 100 ul 50 nM [3H]-Dizocilpin und 50 ul Puffer für 60 Minuten bei 23 ℃ inkubiert werden. Die unspezifische Bindung wird durch unmarkiertes Dizocilpin definiert. Die Inkubation wird durch schnelle Filtration durch Whatman GF/B-Filter beendet, die sofort mit zwei 5-ml-Portionen eiskalten Assay-Puffers in einem Brandel M 24-R Zellharvester gewaschen werden. Die für den vollständigen Filtrations- und Waschvorgang erforderliche Zeit beträgt weniger als 10 Sekunden. Die Radioaktivität auf den Filtern wird durch Flüssigszintillationszählung in Standardfläschchen mit 10 ml Hydrofluor bei einer Zähleffizienz von 41% bestimmt.
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| In vivo |
Alle Kontrollratten zeigen nach einer ischämischen Rückenmarksverletzung (ISCI) schwere dauerhafte neurologische Defizite, während die mit Dizocilpin behandelten Ratten statistisch (P < 0,05) ein besseres neurologisches Ergebnis und eine gute Erholung aufweisen. Die Histopathologie zeigt eine schwere neuronale Nekrose in der lumbalen grauen Substanz der Kontrollratten, während die mit Dizocilpin behandelten Ratten eine leichte Verletzung aufweisen. Diese Ergebnisse zeigen, dass eine Einzeldosis Dizocilpin, die vor ISCI verabreicht wird, eine signifikante Neuroprotektion bietet. |
Literatur |
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Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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