nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S8775
| Verwandte Ziele | Bcl-2 Caspase PD-1/PD-L1 Ferroptosis p53 Apoptosis related Synthetic Lethality STAT TNF-alpha Ras |
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| Weitere RIP kinase Inhibitoren | Necrostatin-1 (Nec-1) Necrostatin 2 racemate (Nec-1s) GSK872 Mito-TEMPO GSK'963 RIPA-56 GSK2982772 Resibufogenin GSK583 GSK2983559 (compound 3) |
| Molekulargewicht | 384.47 | Formel | C24H24N4O |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | 3 years -20°C powder |
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| CAS-Nr. | 2158197-70-5 | -- | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | CC1=CC=C(C=C1)OC2=C3C=CC(=CC3=NC=C2)C4=CN(N=C4)C5CCNCC5 | ||
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In vitro |
DMSO
: 13 mg/mL
(33.81 mM)
Ethanol : 4 mg/mL Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
RIP3 kinase
20.8 nM
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| In vitro |
HS-1371 zeigt eine hemmende Wirkung auf die S227-Autophosphorylierung von RIP3 auf Basisebene. Es zeigt eine vollständige hemmende Wirkung auf die TNF-induzierte Nekroptose-Signalgebung, wobei keine Phosphorylierung von RIP3 und MLKL in HT-29-Zellen nachweisbar ist. Die Hemmung der RIP3-Kinaseaktivität durch diese Verbindung blockiert die Bildung des Nekrosom-Komplexes, was eine Störung der MLKL-Rekrutierung zeigt. Diese Chemikalie rettet Zellen vor TNF-induzierter Nekroptose. Sie rettet Zellen vor RIP3-abhängigem nekroptotischem Zelltod, aber nicht vor apoptotischem Zelltod. |
| Kinase-Assay |
Enzymatische Assays
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Die hemmenden Aktivitäten aller Verbindungen gegenüber RIP3 wurden von Reaction Biology Corp. mittels radiometrischer Kinase-Assays ([γ-32P]ATP) gemessen. Die enzymatische Aktivität von RIP3 wurde unter Verwendung von 20 μM Myelin-Basischem Protein (MBP), gelöst in frisch zubereitetem Reaktionspuffer (20 mM HEPES (pH 7,5), 10 mM MgCl2, 1 mM EGTA, 0,02 % BRIJ-35, 0,02 mg/mL BSA, 0,1 mM Na3VO4, 2 mM DTT, 1 % DMSO), überwacht. Jeder mutmaßliche RIP3-Inhibitor wurde in 100 % DMSO in spezifischen Konzentrationen gelöst und seriell mit epMotion 5070 in DMSO verdünnt. Menschliches RIP3 und 20 μM Peptidsubstrat (MBP) wurden zum Reaktionspuffer gegeben. Nach Zugabe des in DMSO gelösten Kandidaten-Inhibitors zur Kinase-Reaktionsmischung mittels Akustik-Technologie (Echo550; Nanoliter-Bereich) wurde die Reaktionsmischung 20 Minuten bei Raumtemperatur inkubiert. Um die enzymatische Reaktion zu initiieren, wurde 33P-ATP mit einer spezifischen Aktivität von 10 μCi/μL zur Reaktionsmischung gegeben, um eine finale ATP-Konzentration von 10 μM zu erreichen. Die Radioaktivität wurde dann mittels Filterbindungsmethode nach Inkubation der Reaktionsmischung für 2 Stunden bei Raumtemperatur überwacht. Bei gegebenen Inhibitor-Konzentrationen wurde die biochemische Potenz durch den prozentualen Anteil der verbleibenden Kinase-Aktivität im Vergleich zur Vehikel-Reaktion (Dimethylsulfoxid) gemessen. Kurvenanpassungen und IC50-Werte wurden dann mit dem PRISM-Programm erhalten. Der ATP-kompetitive Inhibitor Staurosporin (STSP) wurde in dieser Studie als positive Kontrolle verwendet, aufgrund seiner hohen biochemischen Potenz gegen verschiedene Kinasen, einschließlich RIP3.
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Literatur |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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