nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S2245
| Verwandte Ziele | HDAC PARP DNA-PK WRN DNA/RNA Synthesis Topoisomerase PPAR Sirtuin Casein Kinase eIF |
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| Weitere ATM/ATR Inhibitoren | Ceralasertib (AZD6738) AZD1390 Berzosertib (VE-822) Lartesertib (M4076) Camonsertib (RP-3500) KU-60019 KU-55933 VE-821 AZ20 AZD0156 |
| Molekulargewicht | 349.35 | Formel | C17H15N7O2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 1080622-86-1 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | COC1=C(C=C2C(=C1)C(=NC=N2)N3C(=NC(=N3)C4=CC=CC=N4)N)OC | ||
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In vitro |
4-Methylpyridine : 5 mg/mL
DMSO
: 0.28 mg/mL
(0.8 mM)
Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
ATM
410 nM
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| In vitro |
In vitro wird CP-466722 als potenzieller Inhibitor identifiziert, der die Aktivität der gereinigten ATM-Kinase zur Phosphorylierung des GST-p53(1–101)-Substrats verringert. Darüber hinaus zeigt diese Verbindung auch hemmende Aktivitäten gegen abl- und src-Kinasen. In HeLa-Zellen führt diese Verbindung in Dosen von 6 μM zu einer Hemmung der ATM-abhängigen Phosphorylierung durch reversible Hemmung der durch ionisierende Strahlung (IR) induzierten ATM-Kinase-Aktivität. Außerdem wird die ATM-abhängige p53-Induktion durch diese Chemikalie in MCF-7-Brustkrebszellen des Menschen sowie in primären und immortalisierten diploiden menschlichen Fibroblasten gehemmt. Als Reaktion auf IR erhöht diese Verbindung den Anteil der Zellen mit G2/M-DNA-Gehalt und reduziert den Anteil der Zellen mit G1-Phasen-DNA-Gehalt in HeLa-Zellen. Eine kurzzeitige Exposition gegenüber dieser Chemikalie für einen Zeitraum von 4 Stunden sensibilisiert HeLa-Zellen für IR, ohne die Zellplattierung oder die Zellviabilität zu beeinflussen.
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| Kinase-Assay |
In-vitro-Kinase-Assays
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Um Kleinmolekül-Inhibitoren der ATM-Kinase-Aktivität zu screenen, wird ein In-vitro-Kinase-Assay adaptiert und ein ELISA-Assay entwickelt, der den Phosphorylierungsstatus des ATM-Downstream-Ziels p53 misst. Rekombinantes GST-p53(1-101) und Volllängen-Flag-markiertes ATM & ATR werden gereinigt, um in den ELISA- und In-vitro-Kinase-Assays verwendet zu werden. Kurz gesagt, Nunc 96-Well Maxisorp-Platten werden über Nacht (4 °C) mit 2 μg gereinigtem, rekombinantem GST-p53(1-101) in PBS beschichtet. Alle nachfolgenden Inkubationen werden bei Raumtemperatur durchgeführt. Die Platten werden (0,05 % v/v-Tween/PBS) gewaschen, bevor gereinigte rekombinante Volllängen-ATM-Kinase (30 ng–60 ng) in einem Endvolumen von 80 μL Reaktionspuffer (20 mM HEPES, 50 mM NaCl, 10 mM MgCl2, 10 mM MnCl2, 1 mM DTT und 1 μM ATP) in Anwesenheit oder Abwesenheit von CP-466722 hinzugefügt wird. Diese Verbindung (10 μM) wird den Platten in Duplikaten zugesetzt und der Kinase-Assay wird (90 Minuten) inkubiert. Die Platten werden (0,05 % v/v-Tween/PBS) gewaschen, blockiert (1 Stunde, 1 % w/v-BSA/PBS) und gespült, bevor Anti-Phospho(Ser15)-p53-Antikörper (1:1000/PBS) zu den Platten gegeben und (1 Stunde) inkubiert wird. Um unspezifische Bindung zu reduzieren, werden die Platten (0,05 % v/v-Tween/PBS) gewaschen, bevor (1 Stunde) mit HRP-konjugiertem Ziegen-Anti-Kaninchen-IgG-Sekundärantikörper (1:5000/PBS) inkubiert wird. Sekundärantikörper, der an das phosphorylierte GST-p53(1–101)-Protein gebunden ist, wird mit TMB-Substrat-Reagenz detektiert. Die Platten werden (15 Minuten–30 Minuten) entwickelt und die Reaktion wird (1 M H2SO4 Endkonzentration) gestoppt, bevor die Absorption bestimmt wird (λ450nm). Diese Verbindung, die die ATM-Kinase-Aktivität in ELISA-Assays hemmt, wird hinsichtlich der Hemmung von ATM/ATR-Kinasen unter Verwendung von In-vitro-Kinase-Assays charakterisiert. Western Blotting unter Verwendung des Anti-Phospho(Ser15)-p53-Antikörpers wird als Ablesewert der ATM/ATR-Hemmung verwendet. Eine erweiterte Analyse dieser Chemikalie (10 μM) gegen ein kommerziell erhältliches Kinase-Panel wird von Upstate durchgeführt.
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Literatur |
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Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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