nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S8929
| Verwandte Ziele | Dehydrogenase HSP Transferase P450 (e.g. CYP17) PDE phosphatase PPAR Vitamin Carbohydrate Metabolism Mitochondrial Metabolism |
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| Weitere Serine/threonin kinase Inhibitoren | WNK463 SRPIN340 Benzamidine HCl SPHINX31 SGC-GAK-1 ML281 BAY-1816032 DCLK1-IN-1 ZT-12-037-01 Luvixasertib (CFI-402257) |
| Molekulargewicht | 451.83 | Formel | C18H12ClF2N5O3S |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | 3 years -20°C powder |
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| CAS-Nr. | 2183470-12-2 | -- | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | COC1=C(C=C(C=N1)Cl)S(=O)(=O)NC2=C(C(=C(C=C2)F)C#CC3=CN=C(N=C3)N)F | ||
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In vitro |
DMSO
: 15 mg/mL
(33.19 mM)
Water : Insoluble Ethanol : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
GCN2
(Cell-free assay) 2.4 nM
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| In vitro |
Die Behandlung von akuter lymphoblastischer Leukämie (ALL)-Zellen mit GCN2iB macht ALL-Zellen empfindlich gegenüber ASNase, indem sie die Induktion von ASNS verhindert, was zu reduzierten Spiegeln der De-novo-Proteinsynthese führt. Die kombinierte Behandlung mit ASNase und dieser Verbindung induziert den stressaktivierten MAPK-Signalweg und löst dadurch Apoptose aus. Mittels Zellpanel-Analysen zeigen wir auch, dass Zellen der akuten myeloischen Leukämie und des Pankreaskarzinoms sehr empfindlich auf die kombinierte Behandlung reagieren. |
| Kinase-Assay |
GCN2-Kinase-Assay
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Rekombinantes GCN2 (1 nmol/L)-Protein wird 60 Minuten lang mit GCN2iB vorinkubiert und dann bei 25 °C mit ATP (KM-Wert von GCN2 = 190 μmol/L) und dem grün fluoreszierenden Protein-eIF2α-Substrat (130 nmol/L) inkubiert. Die Menge des phosphorylierten Substrats wird mithilfe des LanthaScreen Tb-anti-p-eIF2α (pSer52)-Antikörperkits bestimmt. Der IC50-Wert der eIF2α-Kinase wird mit der XLfit-Software gemessen.
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| In vivo |
Die Kombination der ASNase-Behandlung mit GCN2iB blockiert synergetisch das In-vivo-Tumorwachstum in ALL-, AML- und Pankreas-Xenograftmodellen. |
Literatur |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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