nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.: S7995
Chemische Struktur
| Molekulargewicht | 395.88 | Formel | C15H18FN3O2S.Cl H.2 H2 O |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
|---|---|---|---|---|---|
| CAS-Nr. | 887375-67-9 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | K-115 hydrochloride dihydrate | Smiles | CC1CNCCCN1S(=O)(=O)C2=CC=CC3=CN=CC(=C32)F.O.O.Cl | ||
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In vitro |
Water : 79 mg/mL
DMSO
: 26 mg/mL
(65.67 mM)
Ethanol : 5 mg/mL |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
ROCK2
(Cell-free assay) 19 nM
ROCK1
(Cell-free assay) 51 nM
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|---|---|
| In vitro |
In monkey trabecular meshwork (TM) cells, Ripasudil induces retraction and rounding of cell bodies as well as disruption of actin bundles. In Schlemm's canal endothelial (SCE) cells, Ripasudil significantly decreases transendothelial electrical resistance (TEER), increases the transendothelial flux of FITC-dextran, and disrupts cellular localization of ZO-1 expression. |
| Kinase-Assay |
Kinase-Inhibitions-Assay
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ROCK 1 (0,75 ng/μL) und ROCK 2 (0,5 ng/μL) werden mit verschiedenen Konzentrationen von K-115, Y-27632 oder HA-1077 bei 25 °C für 90 min in 50 mmol/L Tris-HCl-Puffer (pH 7,5) inkubiert, der 100 mmol/L KCl, 10 mmol/L MgCl2, 0,1 mmol/L EGTA, 30 μmol/L Long S6 Kinase Substratpeptid und 1 μmol/L ATP in einem Gesamtvolumen von 40 μL enthält. PKACα, PKC und CaMKIIα werden ebenfalls mit verschiedenen Konzentrationen von K-115, Y-27632 oder HA-1077 inkubiert. PKACα (0,0625 ng/μL) wird bei 25 °C für 30 min in 40 mmol/L Tris-HCl-Puffer (pH 7,5) inkubiert, der 20 mmol/L MgCl2, 1 mg/mL BSA, 5 μmol/L Kemptid-Peptidsubstrat und 1 μmol/L ATP in einem Gesamtvolumen von 40 μL enthält. PKC (0,025 ng/μL) wird bei 25 °C für 80 min in 20 mmol/L Tris-HCl-Puffer (pH 7,5) inkubiert, der 20 mmol/L MgCl2, 0,4 mmol/L CaCl2, 0,1 mg/mL BSA, 0,25 mmol/L EGTA, 25 ng/mL Phosphatidylserin, 2,5 ng/mL Diacylglycerin, 0,0075% Triton-X-100, 25 μmol/L DTT, 10 μmol/L Neurogranin (28–43) Peptidsubstrat und 1 μmol/L ATP in einem Gesamtvolumen von 40 μL enthält. CaMKIIα (0,025 ng/μL) wird bei 25 °C für 90 min in 50 mmol/L Tris-HCl-Puffer (pH 7,5) inkubiert, der 10 mmol/L MgCl2, 2 mmol/L CaCl2, 0,04 mg/mL BSA, 16 μg/mL gereinigtes Calmodulin aus Rinderhoden, 500 μmol/L DTT, 50 μmol/L Autocamitid 2 und 1 μmol/L ATP in einem Gesamtvolumen von 40 μL enthält. Nach der Inkubation werden 40 μL Kinase-Glo Luminescent Kinase Assay Lösung hinzugefügt und 10 min bei 25 °C belassen. Die relativen Lichteinheiten (RLU) werden mit einem Luminometer gemessen. Die RLU ohne Testverbindung wird als 100% (Kontrollwert) und die ohne Enzym und Verbindung als 0% (Normalwert) festgelegt. Die Reaktionsrate (% der Kontrolle) wird dann aus den RLU mit Zugabe jeder Konzentration der Testverbindungen berechnet, und die 50%igen Hemmkonzentrationen (IC50) werden durch logistische Regressionsanalyse mittels SAS bestimmt.
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| In vivo |
In albino rabbits and monkeys, topical instillation of Ripasudil significantly reduces intraocular pressure (IOP) with maximum IOP reduction of 8.55 mmHg and 4.36 mmHg at 0.5 % and 0.4%, respectively. Ripasudil (1 mg/kg daily, p.o.) exerts a neuroprotective effect on retinal ganglion cell (RGC) after optic nerve crush (NC) by suppressing oxidative stress through pathways involving the Nox family in a mouse model. |
Literatur |
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(Daten von https://clinicaltrials.gov, aktualisiert am 2026-08-17)
| NCT-Nummer | Rekrutierung | Erkrankungen | Sponsor/Kooperationspartner | Startdatum | Phasen |
|---|---|---|---|---|---|
| NCT05275972 | RECRUITING | Fuchs; Fuchs Dystrophy; Fuchs' Endothelial Dystrophy |
Stanford University |
2023-01-23 | PHASE3 |
| NCT05289661 | ACTIVE_NOT_RECRUITING | Fuchs |
Stanford University |
2022-07-15 | PHASE3 |
| NCT05636579 | RECRUITING | Corneal Edema; Corneal Endothelial Dystrophy; Endothelial Dysfunction; Fuchs Dystrophy; Fuchs' Endothelial Dystrophy; Bullous Keratopathy; Pseudophakic Bullous Keratopathy; Corneal Edema Pseudophakic |
Asociación para Evitar la Ceguera en México |
2022-11-08 | PHASE1 |
| NCT06048380 | RECRUITING | Fuchs' Endothelial Dystrophy; Cataract |
Singapore Eye Research Institute |
2025-03-01 | PHASE3 |
| NCT05795699 | COMPLETED | Fuchs Endothelial Corneal Dystrophy |
Kowa Research Institute, Inc. |
2023-03-30 | PHASE3 |
| NCT03813056 | UNKNOWN | Fuchs Endothelial Dystrophy |
Michael D. Straiko, MD |
2019-03-25 | PHASE2 |