nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S9658
| Verwandte Ziele | CDK HSP PD-1/PD-L1 ROCK Wee1 DNA/RNA Synthesis Microtubule Associated Ras KRas Casein Kinase |
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| Weitere Aurora Kinase Inhibitoren | Hesperadin Barasertib-HQPA (AZD2811) Alisertib (MLN8237) Tozasertib (VX-680) ZM 447439 MLN8054 Danusertib (PHA-739358) MK-5108 TCS7010 (Aurora A Inhibitor I) AMG-900 |
| Molekulargewicht | 453.47 | Formel | C25H20FN7O |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | 3 years -20°C powder |
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| CAS-Nr. | 2682114-54-9 | -- | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | CC1N=CC(=N1)C2=CC=C3C(=NC=NC3=C2)NC4=CC=CC(=C4)NC(=O)NC5=CC(=CC=C5)F | ||
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In vitro |
DMSO
: 91 mg/mL
(200.67 mM)
Ethanol : 2 mg/mL Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
Aurora B
(Cell-free assay) 0.316 nM
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| In vitro |
SP-96 zeigt in Aurora B enzymatischen Assays eine sub-nanomolare Potenz (IC50 = 0,316 ± 0,031 nM). Diese Verbindung zeigt eine >2000-fache Selektivität gegenüber FLT3 und KIT, was für die normale Hämatopoese wichtig ist. Die Enzymkinetik dieses Inhibitors zeigt eine nicht-ATP-kompetitive Hemmung, was ihn zu einem First-in-Class-Inhibitor macht. Er zeigt eine selektive Wachstumshemmung im NCI60-Screening, einschließlich der Hemmung von MDA-MD-468, einer triple-negativen Brustkrebszelllinie. |
| Kinase-Assay |
Aurora Kinase B enzymatischer Assay
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Der Kinase-Hemmtest wird durch Messung der Kinaseaktivität in einem Mikrofluidik-Assay durchgeführt. Die Trennung eines phosphorylierten Produkts vom Substrat wird überwacht. Der Assay wird mit einem 12-Sipper-Chip auf einem Caliper EZ Reader II durchgeführt. Das für den Trennpuffer verwendete Rezept ist 100 mM HEPES, 10 mM EDTA, 0,015 % Brij-35, 0,1 % CR-3. Die Stammlösungen der Verbindung (20 mM in DMSO) werden in Kinase-Puffer verdünnt. 1 μL der gewünschten Stammlösung wird in eine 384-Well-Mikrotiter-Assay-Platte überführt. Das Aurora B-Enzym wird in Kinase-Puffer auf eine Konzentration von 2 nM verdünnt. 5 μL der Enzymmischung werden auf die Assay-Platte überführt. Die Inhibitoren/Aurora B-Enzym werden 60 Minuten lang unter leichtem Schütteln inkubiert. Eine Substratmischung wird hergestellt, die ATP und 5FAM-markiertes Peptid enthält, gelöst im oben beschriebenen Kinase-Puffer. 5 μL der Substratlösung werden zur Assay-Platte gegeben. Die Laufkonzentrationen sind wie folgt: Peptid (1,5 μM), ATP (190 μM) und diese Verbindung 12-Punkt-½log-Verdünnungen (0,2 mM-0,632 nM). Für die Positivkontrolle wird kein Inhibitor hinzugefügt, und für die Negativkontrolle wird kein Enzym hinzugefügt. Für die Laufkontrolle wird Barasertib verwendet. Die prozentuale Hemmung wird durch Vergleich des Ausgangspeptids mit den phosphorylierten Produktpeaks gemessen.
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Literatur |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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