nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S7591
| Verwandte Ziele | HDAC JAK BET PKC PARP HIF PRMT EZH2 AMPK Histone Acetyltransferase |
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| Weitere Histone Methyltransferase Inhibitoren | Pinometostat (EPZ5676) 3-Deazaneplanocin A (DZNep) Hydrochloride BIX-01294 trihydrochloride UNC1999 EPZ015666 (GSK3235025) EPZ004777 MM-102 (HMTase Inhibitor IX) Chaetocin SGC 0946 EPZ005687 |
| Molekulargewicht | 413.47 | Formel | C25H23N3O3 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 1374601-40-7 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | COC(=O)C1=CC2=C(C=C1)N(C(=N2)NC(=O)C3=CC=CC=C3)CCCC4=CC=CC=C4 | ||
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In vitro |
DMSO
: 20 mg/mL
(48.37 mM)
Water : Insoluble Ethanol : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
G9a
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| In vitro |
BRD4770 reduziert die zellulären Spiegel von di- und trimethyliertem H3K9 durch Hemmung von G9a, induziert Seneszenz und hemmt sowohl die Verankerungs-abhängige als auch die -unabhängige Proliferation in der Pankreaskrebszelllinie PANC-1. Die Kombination von Gossypol und dieser Verbindung erhöht die LC3-II-Spiegel und die Autophagosomenzahl und wirkt somit synergistisch, um den Zelltod in PANC-1-Zellen zu induzieren.
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| Kinase-Assay |
Biochemische Aktivität von G9a
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Dissociation Enhanced Lanthanide Fluoro-ImmunoAssays (DELFIA) werden in weißen, opaken 384-Well-Platten durchgeführt, die mit Neutravidin beschichtet sind. Testverbindungen werden auf 12 μg/mL in 50 mM Tris-HCl pH 8,5, das 4 % DMSO enthält, verdünnt, und 10 μL werden in die Vertiefungen gegeben. Blind- und Kontrollvertiefungen erhielten nur die Verbindungspufferlösung. GST-G9a bei 10 μg/mL und SAM bei 40 μM werden in 50 mM Tris HCl pH 8,5/10 mM DTT verdünnt und in einem Volumen von 20 μL zugegeben. Blindvertiefungen erhalten nur Tris/DTT-Puffer. Die Reaktionen werden durch Zugabe von 800 nM H3(1-20)-cysbiotin-Substrat in 50 mM Tris pH 8,5 in einem Volumen von 10 μL initiiert und 60 Minuten bei Raumtemperatur inkubiert. Die Platten werden 3 Mal mit 100 μL Waschpuffer (50 mM Tris pH 7,4, 150 mM NaCl, 0,05 % Tween 20, 0,2 % BSA) gewaschen. Anschließend werden 50 μL Fluoroimmunoassay (FI)-Puffer (50 mM Tris HCl pH 7,8, 150 mM NaCl, 0,05 % Tween 40, 25 μM DTPA, 0,2 % BSA, 0,05 % BGG), der 5 ng α-2X-di-meth H3-K9 und 5 ng Ziegen-Anti-Kaninchen-Eu-Chelat enthält, zu allen Vertiefungen der Platte gegeben, und die Platte wird eine weitere Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Die Platten werden 3 Mal mit 100 μL Waschpuffer gewaschen und 50 μL Enhancer-Lösung wird zu jeder Vertiefung gegeben. Die zeitaufgelöste Fluoreszenz wird nach 45 Minuten auf einem Viewlux Microplate Imager gemessen, wobei 15 Sekunden mit einem 354 μs-Fenster, 400 μs-Verzögerung, Anregung bei 360 nm und Emission bei 618 nm abgebildet wird.
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Literatur |
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Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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