nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S7611
| Verwandte Ziele | HDAC JAK BET PKC PARP HIF PRMT EZH2 AMPK Histone Acetyltransferase |
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| Weitere Histone Methyltransferase Inhibitoren | Pinometostat (EPZ5676) 3-Deazaneplanocin A (DZNep) Hydrochloride BIX-01294 trihydrochloride UNC1999 EPZ015666 (GSK3235025) EPZ004777 MM-102 (HMTase Inhibitor IX) Chaetocin SGC 0946 EPZ005687 |
| Molekulargewicht | 390.48 | Formel | C23H26N4O2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 1418308-27-6 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | KB-145943 | Smiles | CCC(CC)N1C=CC2=C(C=C(C=C21)C#N)C(=O)NCC3=C(C=C(NC3=O)C)C | ||
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In vitro |
DMSO
: 42 mg/mL
(107.55 mM)
Water : Insoluble Ethanol : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
EZH2 (Y641F)
(Cell-free assay) 13 nM
Ezh2 (wild-type)
(Cell-free assay) 15 nM
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| In vitro |
In DLBCL-Zellen hemmt EI1 die zelluläre H3K27-Methylierung und aktiviert die Expression des Ezh2-Zielgens p16. In murinen embryonalen Fibroblasten hemmt diese Verbindung auch H3K27me3 und die Zellproliferation. Darüber hinaus hemmt es selektiv das Wachstum von DLBCL-Zellen, die eine Ezh2-Mutation tragen, und verursacht Zellzyklusarrest und Apoptose.
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| Kinase-Assay |
Biochemischer Assay
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Zur Bestimmung der IC50 wird EI1 dreifach in DMSO seriell verdünnt, um insgesamt 12 Konzentrationen zu erhalten, wobei die Startkonzentration 1 μM beträgt. Die Reaktion wird 120 Minuten lang bei Raumtemperatur inkubiert und durch Zugabe einer Quenchlösung (2,5 % TFA mit 320 nM d4-SAH) gestoppt. Die SAH-Produktion wird unter Verwendung eines API 4000 Triple-Quadrupol-Massenspektrometers mit Turbulon Spray, gekoppelt mit Prominence UFLC, quantifiziert. Der Prozentsatz der Hemmung wird unter Verwendung von positiven (ohne Inhibitor) und negativen (ohne Enzym) Kontrollen normalisiert und die IC50 mit PRISM berechnet. Enzymologie-Studien zur S-Adenosylmethionin (SAM)-Konkurrenz werden mit leichter Modifikation der Reaktionsbedingungen durchgeführt: 10 μM dieser Verbindung werden als Startdosis für die serielle Verdünnung verwendet. SAM wird über einen Bereich zwischen 1 μM und 50 μM (entsprechend 1 × Km und 50 × Km) titriert, und das Substratpeptid ist in der endgültigen Reaktionsmischung in seiner gesättigten Bedingung (10 μM) vorhanden. Für das Histone Methyltransferase (HMT)-Profiling in Tabelle 1 sind alle HMTs gereinigte rekombinante Proteine aus Escherichia coli oder dem Baculovirus-System. Die katalytische Domäne von G9a, SuV39H2, Set7/9, CARM1, SETD8, NSD3, SETD2 und Dot1L sowie das vollständige SmyD2-Protein wurden in den biochemischen Assays verwendet. HMT-biochemische Reaktionen werden sorgfältig mit Enzymologie-Studien charakterisiert und die SAM- und Substrat-Km bestimmt. Die SAM- und Substratkonzentrationen werden für die meisten HMTs bei ihren jeweiligen Km gehalten, außer bei denen (SmyD2 und Set7/9) mit einem niedrigen SAM-Km-Wert, für die 0,5 μM SAM verwendet wird. Alle HMT-Reaktionen werden im selben Assay-Format durchgeführt, wobei die SAH-Produktion aus der biochemischen Reaktion mittels LC-MS quantifiziert wird.
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Literatur |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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