nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S7832
| Verwandte Ziele | HDAC JAK BET PKC PARP HIF PRMT EZH2 AMPK Histone Acetyltransferase |
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| Weitere Histone Methyltransferase Inhibitoren | Pinometostat (EPZ5676) 3-Deazaneplanocin A (DZNep) Hydrochloride BIX-01294 trihydrochloride UNC1999 EPZ015666 (GSK3235025) EPZ004777 MM-102 (HMTase Inhibitor IX) Chaetocin SGC 0946 EPZ005687 |
| Molekulargewicht | 298.34 | Formel | C16H18N4O2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 1687736-54-4 | SDF herunterladen SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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| Synonyme | N/A | Smiles | C1CCN(C1)C(=O)CNC(=O)NC2=CC3=C(C=C2)C=NC=C3 | ||
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In vitro |
DMSO
: 59 mg/mL
(197.76 mM)
Ethanol : 59 mg/mL Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
PRMT3
31 nM
PRMT3
53 nM(Kd)
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| In vitro |
In Zellen bindet SGC707 an PRMT3 und reduziert die PRMT3-abhängige H4R3me2a. Diese Verbindung stabilisiert auch PRMT3 in HEK293- und A549-Zellen mit EC50-Werten von 1,3 μM bzw. 1,6 μM.
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| Kinase-Assay |
PRMT3 biochemischer Assay
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Ein Radioaktivitäts-basierter Assay wird optimiert und verwendet, um die Hemmung von PRMT3 in vitro zu bestimmen. In einem Szintillationsnäherungsassay (SPA) diente tritiertes S-Adenosylmethionin (3H-SAM) als Methylgruppen-Donator, um biotinyliertes Histonpeptid-Substrat zu methylieren. Nach Abschluss der Reaktion wird die Reaktionsmischung in die Vertiefungen einer Streptavidin-/Szintillator-beschichteten Mikroplatte überführt. Die an Streptavidin gebundenen biotinylierten Peptide bringen das eingebaute 3H-Methyl und den Szintillator in enge Proximität. Die Menge des methylierten Peptids wird durch Verfolgung der Radioaktivität (Counts per Minute) quantifiziert, gemessen mit dem TopCount NXT™ Microplate Scintillation and Luminescence Counter. Aufgrund der sehr sauren Natur der 3H-SAM-Lösung wird nicht-tritiertes (kaltes) SAM verwendet, um die Reaktionen zu ergänzen. Als Substrat wird das C-terminal biotinylierte Peptid verwendet, das aus den ersten 24 Aminosäureresten des Histons H4 (H4 1-24) besteht. Die typische Assay-Mischung enthielt 0,01% Tween-20, 5 mM DTT, 20 nM PRMT3, 0,3 µM B-H4 1-24 und 28 µM (5 µM 3H-SAM plus 23 µM kaltes SAM) SAM in 20 mM Tris-HCl (pH 7,5) und einem Endvolumen von 20 µL. Die IC50-Werte werden bei Km-Konzentrationen beider Substrate durch Titration dieser Verbindung in der Reaktionsmischung in einem Bereich zwischen 2000-0,2 nM bestimmt.
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| In vivo |
Bei männlichen CD-1-Mäusen zeigt SGC707 (30 mg/kg, i.p.) eine gute Plasmaexposition über 6 Stunden mit einem Spitzenplasmaspiegel von 38000 nM, was darauf hindeutet, dass diese Verbindung für Tierstudien geeignet ist.
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Literatur |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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