nur für Forschungszwecke

UNC0631 Histone Methyltransferase Inhibitor

Kat.-Nr.S7610

UNC 0631 ist ein potenter Inhibitor der Histone Methyltransferase G9a mit einer IC50 von 4 nM. Es reduziert potent H3K9me2-Spiegel in MDA-MB-231-Zellen mit einer IC50 von 25 nM.
UNC0631 Histone Methyltransferase Inhibitor Chemical Structure

Chemische Struktur

Molekulargewicht: 635.93

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Qualitätskontrolle

Charge: Reinheit: 99.02%
99.02

Chemische Informationen, Lagerung & Stabilität

Molekulargewicht 635.93 Formel

C37H61N7O2

Lagerung (Ab dem Eingangsdatum)
CAS-Nr. 1320288-19-4 SDF herunterladen Lagerung von Stammlösungen

Löslichkeit

In vitro
Charge:

DMSO : 100 mg/mL (157.25 mM)
(Feuchtigkeitskontaminiertes DMSO kann die Löslichkeit verringern. Verwenden Sie frisches, wasserfreies DMSO.)

Ethanol : 100 mg/mL

Water : Insoluble

Molaritätsrechner

Masse Konzentration Volumen Molekulargewicht
Verdünnungsrechner Molekulargewichtsrechner

In vivo
Charge:

In-vivo-Formulierungsrechner (Klare Lösung)

Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)

mg/kg g μL

Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berechnungsergebnisse:

Arbeitskonzentration: mg/ml;

Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.

Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.

Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.

Wirkmechanismus

Targets/IC50/Ki
G9a
In vitro

In MCF7-, 22RV1- und IMR90-Zellen reduziert UNC0631 potent die H3K9me2-Spiegel und zeigt eine hervorragende Trennung der funktionellen Potenz gegenüber der Zellulartoxizität. Diese Verbindung kann somit als Werkzeug für die biomedizinische Forschungsgemeinschaft verwendet werden, um die Biologie von G9a und ihre Rolle bei der Chromatin-Remodellierung weiter zu untersuchen.

Kinase-Assay
SAHH-gekoppelte Assays
Dieser Assay nutzt SAHH, um das Methyltransferprodukt SAH in Gegenwart von Adenosin-Deaminase, die Adenosin zu Inosin umwandelt, zu Homocystein und Adenosin zu hydrolysieren. Die Homocystein-Konzentration wird dann durch Konjugation ihrer freien Sulfhydrylgruppe an einen Thiol-sensitiven Fluorophor, ThioGlo, bestimmt. Für die IC50-Bestimmungen werden die Assay-Mischungen in 25 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 1 mM EDTA, 2 mM MgCl2, 0,01 % Triton X-100 mit 5 μM SAHH, 0,3 U/mL Adenosin-Deaminase, 25 μM SAM und 15 μM ThioGlo hergestellt. G9a, GLP, SETD7, SETD8, PRMT3 und SUV39H2 werden bei 25 nM, 100 nM, 200 nM, 250 nM, 500 nM bzw. 100 nM getestet. Diese Verbindung wird in Konzentrationen von 4 nM bis 16 μM zugegeben. Nach 2 min Inkubation werden die Reaktionen durch Zugabe der Histonpeptide initiiert: 10 μM H3(1–25) für G9a, 20 μM H3(1–25) für GLP, 100 μM H3(1–25) für SETD7, 500 μM H4(1–24) für SETD8, 10 μM H4(1–24) für PRMT3 und 200 μM H3K9Me1 (1–15) für SUV39H2. Die Methylierungsreaktion wird durch Überwachung der Fluoreszenzzunahme mit einem Biotek Synergy2 Plattenleser mit 360/40 nm Anregungsfilter und 528/20 nm Emissionsfilter für 20 min in einem 384-Well-Plattenformat verfolgt. Aktivitätswerte werden durch Subtraktion des durch das Peptid oder das Protein verursachten Hintergrunds korrigiert. IC50-Werte werden mit Sigmaplot berechnet. Standardabweichungen werden aus zwei unabhängigen Experimenten berechnet.
Literatur

Technischer Support

Handhabungshinweise

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

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