nur für Forschungszwecke
Kat.-Nr.S7610
| Verwandte Ziele | HDAC JAK BET PKC PARP HIF PRMT EZH2 AMPK Histone Acetyltransferase |
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| Weitere Histone Methyltransferase Inhibitoren | Pinometostat (EPZ5676) 3-Deazaneplanocin A (DZNep) Hydrochloride BIX-01294 trihydrochloride UNC1999 EPZ015666 (GSK3235025) EPZ004777 MM-102 (HMTase Inhibitor IX) Chaetocin SGC 0946 EPZ005687 |
| Molekulargewicht | 635.93 | Formel | C37H61N7O2 |
Lagerung (Ab dem Eingangsdatum) | |
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| CAS-Nr. | 1320288-19-4 | SDF herunterladen | Lagerung von Stammlösungen |
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In vitro |
DMSO
: 100 mg/mL
(157.25 mM)
Ethanol : 100 mg/mL Water : Insoluble |
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In vivo |
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Schritt 1: Geben Sie die untenstehenden Informationen ein (Empfohlen: Ein zusätzliches Tier zur Berücksichtigung von Verlusten während des Experiments)
Schritt 2: Geben Sie die In-vivo-Formulierung ein (Dies ist nur der Rechner, keine Formulierung. Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn es im Abschnitt "Löslichkeit" keine In-vivo-Formulierung gibt.)
Berechnungsergebnisse:
Arbeitskonzentration: mg/ml;
Methode zur Herstellung der DMSO-Stammlösung: mg Wirkstoff vorgelöst in μL DMSO ( Konzentration der Stammlösung mg/mL, Bitte kontaktieren Sie uns zuerst, wenn die Konzentration die DMSO-Löslichkeit der Wirkstoffcharge überschreitet. )
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügenμL PEG300, mischen und klären, dann hinzufügenμL Tween 80, mischen und klären, dann hinzufügen μL ddH2O, mischen und klären.
Methode zur Herstellung der In-vivo-Formulierung: Nehmen Sie μL DMSO Stammlösung, dann hinzufügen μL Maisöl, mischen und klären.
Hinweis: 1. Bitte stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit klar ist, bevor Sie das nächste Lösungsmittel hinzufügen.
2. Achten Sie darauf, das/die Lösungsmittel der Reihe nach hinzuzufügen. Sie müssen sicherstellen, dass die bei der vorherigen Zugabe erhaltene Lösung eine klare Lösung ist, bevor Sie mit der Zugabe des nächsten Lösungsmittels fortfahren. Physikalische Methoden wie Vortex, Ultraschall oder ein heißes Wasserbad können zur Unterstützung des Lösens verwendet werden.
| Targets/IC50/Ki |
G9a
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| In vitro |
In MCF7-, 22RV1- und IMR90-Zellen reduziert UNC0631 potent die H3K9me2-Spiegel und zeigt eine hervorragende Trennung der funktionellen Potenz gegenüber der Zellulartoxizität. Diese Verbindung kann somit als Werkzeug für die biomedizinische Forschungsgemeinschaft verwendet werden, um die Biologie von G9a und ihre Rolle bei der Chromatin-Remodellierung weiter zu untersuchen. |
| Kinase-Assay |
SAHH-gekoppelte Assays
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Dieser Assay nutzt SAHH, um das Methyltransferprodukt SAH in Gegenwart von Adenosin-Deaminase, die Adenosin zu Inosin umwandelt, zu Homocystein und Adenosin zu hydrolysieren. Die Homocystein-Konzentration wird dann durch Konjugation ihrer freien Sulfhydrylgruppe an einen Thiol-sensitiven Fluorophor, ThioGlo, bestimmt. Für die IC50-Bestimmungen werden die Assay-Mischungen in 25 mM Kaliumphosphatpuffer pH 7,5, 1 mM EDTA, 2 mM MgCl2, 0,01 % Triton X-100 mit 5 μM SAHH, 0,3 U/mL Adenosin-Deaminase, 25 μM SAM und 15 μM ThioGlo hergestellt. G9a, GLP, SETD7, SETD8, PRMT3 und SUV39H2 werden bei 25 nM, 100 nM, 200 nM, 250 nM, 500 nM bzw. 100 nM getestet. Diese Verbindung wird in Konzentrationen von 4 nM bis 16 μM zugegeben. Nach 2 min Inkubation werden die Reaktionen durch Zugabe der Histonpeptide initiiert: 10 μM H3(1–25) für G9a, 20 μM H3(1–25) für GLP, 100 μM H3(1–25) für SETD7, 500 μM H4(1–24) für SETD8, 10 μM H4(1–24) für PRMT3 und 200 μM H3K9Me1 (1–15) für SUV39H2. Die Methylierungsreaktion wird durch Überwachung der Fluoreszenzzunahme mit einem Biotek Synergy2 Plattenleser mit 360/40 nm Anregungsfilter und 528/20 nm Emissionsfilter für 20 min in einem 384-Well-Plattenformat verfolgt. Aktivitätswerte werden durch Subtraktion des durch das Peptid oder das Protein verursachten Hintergrunds korrigiert. IC50-Werte werden mit Sigmaplot berechnet. Standardabweichungen werden aus zwei unabhängigen Experimenten berechnet.
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Literatur |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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